Переливание крови у кошек последствия. Гемотрансфузия собак и кошек

В комплексе лечения переливание крови имеет очень важное значение. В клинической практике гемотрансфузии применяют с заместительной целью (перелитые эритроциты находятся в крови реципиента 30-120 дней), стимулирующей целью (действует на различные функции животного организма), с целью улучшения гемодинамики (увеличивается ОЦК, усиливается работа сердца, повышается минутный объем сердца и т.д.), гемостатической целью (переливание крови оказывает стимулирующее действие на систему гемостаза реципиента, вызывая умеренную гиперкоагуляцию, обусловленную увеличением тромбопластической и снижением антикоагулянтной функции крови) (О.К. Гаврилов, 1982).

У собак имеется семь групп крови, определяемых по антигенной принадлежности: А, В, С, D, Е, F и G. Фактор А у животных имеет такое же значение, как и резус-фактор у людей. Этот фактор имеется примерно у 60-65% животных. Повторное переливание крови животному, у которого этого фактора нет, может привести к тяжелым гемотрансфузиологическим последствиям – гемолизу крови и гибели животного.

Первое переливание крови, как правило, не вызывает тяжелых осложнений из-за слабо выраженных антигенных свойств факторов В-G. Однако в некоторых случаях могут наблюдаться аллергические реакции в виде крапивницы, зуда и т.п., которые могут развиться сразу (ранняя реакция) и спустя несколько дней (поздняя реакция). Во избежание этих осложнений необходимо проводить пробы на групповую и индивидуальную совместимость. Для этого необходимо к 1 мл сыворотки реципиента добавить 0,1 мл эритроцитов донора. Реакция производится на стекле при температуре 22-25 0 С. учет осуществляют через 5 минут. При отсутствии агглютинации можно приступать к биологической пробе на индивидуальную совместимость.

Биологическая проба на индивидуальную совместимость проводится путем струйного переливания 10-15 мл крови в течение 3 минут крупным породам собак и 3-5 мл – мелким. Проба проводится трехкратно. При этом у животного, по возможности, измеряется артериальное давление, частота пульса, число дыхательных движений до переливания и через 10-15 минут после струйного введения крови. Беспокойство животного, одышка, тахикардия или аритмия, падение давления, рвота, появление болевых ощущений свидетельствуют о несовместимости переливаемой крови.

При переливании крови следует учитывать, что наиболее подходящей для гемотрансфузии является свежая донорская кровь. Заготовленная заранее кровь уже к 10 дню имеет кислую реакцию (рН до 6,0) и содержит калий в высоких концентрациях (до 8 ммоль/л), что может вызвать аритмию и даже остановку сердца. При переливании заранее заготовленной крови ее необходимо подогревать на водяной бане до температуры 37 0 С, т.к. холодная кровь вызывает гипотермию миокарда, спазм периферических сосудов и ацидоз, легко уходит в кровяное депо. На каждые 200-250 мл цитратной крови вводится 5 мл 10%-ного раствора хлористого кальция, 50 мл 40%-ного раствора глюкозы с 4 ед. инсулина и 20-30 мл 3%-го раствора соды (с целью нейтрализации гиперкалиемии и коррекции ацидоза) (А.А. Бунятян, 1982).

Заготавливая кровь, используют глюгицир (50 мл на 200 мл крови), или следующий состав:

Natrii citrici 2,2%

Ac. citrici 0,8%

Aq. destillatae 94,55%

Такой состав используется в количестве 15 мл на 100 мл крови (М. Закиевич, 1994). Кровь с консервантом можно хранить 21 день при температуре 4 0 С.

Забор крови от животного осуществляется путем венепункции толстой иглой и сливанием ее во флакон с приготовленным консервантом. Для предупреждения коагуляции крови в системе, последнюю необходимо предварительно промыть раствором гепарина или глюгициром, или ввести гепарин донору из расчета 100-200 ед. на 1 кг массы тела. Животному-донору предварительно вводят седативные препараты. Система для взятия крови не должна быть длиннее 25-30 см, т.к. кровь собак склонна к гиперкоагуляции и при большей длине трубки сворачивается в системе. Сосуд для сбора крови необходимо постоянно покачивать с целью перемешивания крови и консерванта.

Без ущерба для здоровья животного можно забирать кровь из расчета 10 мл/кг. Переливают кровь капельно с темпом 40-60 кап/мин из расчета 5-18 мл/кг в час. Повторный забор крови можно производить через 1,5-2 месяца.

При необходимости можно осуществлять заготовку трупной крови (от животных, погибших в результате травм). Заготовка крови в этом случае принципиально не отличается от описанной выше. Если забор крови производить из сердца, можно получить 80-90 мл на кг массы тела. Гепарин в этом случае вводится из расчета 120 ед/кг. Кровь от трупа можно забирать до 6 часов с момента гибели животного.

Для заготовки плазмы используют раствор следующего состава:

Ac. citrici 40.0

Ac. chlorici conc. 7 ml

Aq. destillatae 950 ml

На 900 мл крови добавляют 100 мл этого раствора. Кровь отстаивают в течение 1-2 часов, полученную плазму осторожно переливают в стерильные флаконы и запечатывают. При температуре –15 о С плазму можно сохранять в течение 2 лет. Плазма богата белком, переливание ее показано при острых нарушениях свертываемости крови, гипопротеинемии, интоксикации, для повышения коллоидно-осмотического давления крови.

В повседневной практике врачам довольно часто приходится сталкиваться с проведением различных трансфузиологических операций. Мы остановимся на некоторых из них, имеющих наибольшее значение в лечении больных животных.

Реинфузия крови – переливание крови, излившейся в плевральную или брюшную полости. Реинфузия крови является очень эффективной мерой лечения и предотвращает осложнения, связанные с переливанием донорской крови. Показанием для реинфузии является любая кровопотеря, допускающая использование излившейся в полости (плевральная, брюшная и т.д.) крови. Противопоказаниями являются: гнойное загрязнение излившейся крови, загрязнение излившейся крови мочой или кишечным содержимым, кровотечения, связанные с разрывом матки, почечная недостаточность.

Чаще всего врачу приходится иметь дело с реинфузией крови при разрывах легкого, печени, селезенки, внутрибрюшинных разрывов крупных сосудов. Наиболее простой способ сбора излившейся крови заключается в простом вычерпывании ее из полости ложкой или вымакивания марлей (последний способ значительно хуже, т.к. приводит к существенному разрушению эритроцитов). При сборе крови ее сливают в стерильный флакон с одним из стабилизаторов (глюгицир, цитрат натрия и др.), предварительно профильтровав ее через 4 слоя стерильной марли. После этого флакон закрывают и переливают кровь по обычной методике, осуществляя ее микрофильтрацию через фильтр системы для переливания крови.

Вторым способом забора крови для реинфузии является введение перфорированного трубочного дренажа в брюшную или плевральную полость посредством лапаро- или торакоцентеза. Такой способ позволяет собрать и реинфузировать кровь до оперативного вмешательства, что значительно снижает риск анестезиологического обеспечения, особенно при политравмах, сопровождающихся разрывом паренхиматозных органов и массивной кровопотерей. При эвакуации крови из брюшной полости необходимо убедиться в целостности мочевого пузыря (для этого его необходимо катетеризировать до выполнения лапароцентеза). Небольшие же повреждения кишечника, не сопровождающиеся массивным загрязнением собираемой крови, не являются противопоказанием к ее реинфузии (Е.А. Вагнер с соавт., 1977).

Внутрикостные трансфузии достаточны просты в исполнении, могут использоваться в тех случаях, когда внутривенное введение жидкостей затруднено (гнойные поражения кожи, массивные отеки конечностей и т.д.), а также у щенков и котят. Трансфузии осуществляются внутрикостным введением иглы с мандреном (костномозговая игла Кассирского) в эпифизы костей, крыло подвздошной кости. Перед введением иглы выбривают участок кожи, обрабатывают его как операционное поле (во избежание остеомиелита), прокалывают иглой кожу и подлежащие ткани до кости, затем, преодолевая костный кортикальный слой, получают ощущение "провала" иглы, удаляют мандрен, внутрикостно вводят 0,5-2 мл 2%-го раствора новокаина и проводят инфузию растворов под давлением. По окончании манипуляции кожу обрабатывают йодом и кубатолом.

Аутогемотрансфузия – переливание крови больному животному, взятой у него заблаговременно. Обычно такая необходимость возникает при повторном переливании крови, когда предполагается большая операция с массивной кровопотерей. У животного заблаговременно берут кровь (за 1-2 недели до предполагаемой операции), а затем ее же переливают во время оперативного вмешательства.

Реинфузия асцитической жидкости в сосудистое русло возможна у животных, больных циррозом печени, имеющих выраженный асцит, рефракторный к обычной диуретической терапии. Это позволяет избавиться от большого количества жидкости в брюшной полости, сохранив при этом белок, восстановить его уровень в плазме. Технически это выполняется следующим образом: после пункции брюшной полости асцитическую жидкость собирают в стерильный флакон, и тут же вводят ее внутривенно капельно со скоростью 10 мл/кг в час. За 1 сеанс можно реинфузировать от 10 до 30 мл/кг асцитической жидкости. Такие реинфузии могут проводиться 2-4 раза через 1-2 суток.

При острой кровопотере инфузионно-трансфузионная тактика зависит от количества излившейся крови.

Степень кровопотери	Общая потеря (от ОЦК), %	Общий объем вводимой жидкости (от объема кровопотери), %	Количество крови (от потери), %	Соотношение растворов
				Солевые растворы	Коллоид. растворы
					1
					1
					2
Массивная		кровопотеря +300			3

Введение жидкостей должно осуществляться в две вены одновременно с введением крови.

При острых заболеваниях органов брюшной полости (перитонит, острая кишечная непроходимость) инфузионно-трансфузионная терапия должна проводиться в течение 1-2 часов перед оперативным вмешательством. При низком центральном венозном давлении, выраженной тахикардии объем вводимой жидкости может достигать 0,5 мл/кг/мин – в первый час и в дальнейшем зависит от показателя ЦВД. Интенсивная терапия должна продолжаться во время операции и в послеоперацинном периоде. Проведение интенсивной терапии в этих случаях должно быть направлено на устранение гиповолемии, коррекцию водно-электролитного баланса и КОС, дезинтоксикацию, восстановление реологических свойств крови.

Образование раны в виде песочных часок.

ПеритонитPeritonitis

Абсцесс мошонки

Стафиломикоз семенного канатика

11. Пододерматиты у коней. Причины, классификация, лечение и профилактика.

12. Ревматическое воспаление копыт, причины возникновения, лечение и профилактика.

13. Эпидуральная анестезия, показания, техника выполнения.

14. Кастрация жеребцов.

15. Инфекционный и инвазионный кератоконъюнктивит у животных, клинические признаки, лечение и профилактика.

16. Клинические проявления хирургической инфекции, лечение и профилактика.

17. Травматизм животных. Классификация, лечение и профилактика.

18. Основные заболевания мышц. Классификация, лечение и профилактика.

19. Хирургический сепсис у животных.

20. Осложнения ран грудной полости.

Ситуаційні завдання з хірургії.

3. На ділянці стегна у 10-місячного бика встановлено тверде, обмежене, болюче припухання тканин.

4. При обстеженні бика 4-річного віку встановлено порушення прийому корму. В ротовій порожнині – збільшення язика.

5. Лікар, діагностувавши актиномікоз підшкіряної клітковини на ділянці голови і т.П.

6. У коня на ділянці правого ліктьового бугра при обстеженні виявлено припухання, 8 см в діаметрі і т.Д.

7. У німецької вівчарки за допомогою клінічного і рентгенологічного дослідження виявлено перелом стегнової кістки.

8. У молочному комплексі в серпні з’явилося массове ураження очей у корів, що утримувалися в літніх таборах. І т.Д.

9. Клінічними дослідженнями у корови встановлено ознаки атонії передшлунків. Не з’ясувавши причин захворювання лікар ввів внутрішньовенно 2 мл настоянки кореневища білої чемериці. І т.Д.

10. У бика плідника спостерігається загальне пригнічення, він стоїть дещо згорблений і т.Д.

11. При обстеженні корови лікар виявив ундулюючу припухлість на ділянці гомілки. І т.Д.

12. При обстеженні коня виявлена рана на ділянці заплесневого суглобу розміром 20*12 см і т.Д.

13. У корови, яка хворіла раніше на післяпологове залежування, з латерального боку заплесневого суглобу виявлено припухання – обмежене, неболюче, флюктуююче, холодне і т.Д.

15. У багатьох корів ферми виявлена своєрідна кульгавість тазових кінцівок: у стані спокою тварини дещо відводять кінцівки назад і вбік, опираючись, таким чином, зацепом переважно внутрішнього пальця.

Акушерство и гинекология

1. Причини неповноцінних статевих циклів у корів і заходи до їх нормалізації.

3 Характеристика нормальних родів і взаємовідносин плода і родових і шляхів. Заходи до організації пологових відділень.

4. Переваги і недоліки оперативних: консервативних методів терапії . Затримки посліду у корів.

5 Заходи щодо нормалізації відтворної функції у корів. Стимулирование полового аппарата.

6. Влияние качественной неполноценности рациона на воспроизводительную функцию самок.

7 Парувальна і запліднювальна імпотенція плідників.

8. Заходи з терапії та профілактики після пологових субінволюції матки і ендометриту корів.

9. Штучна неплідність та її різновиди. Заходи щодо її профілактики. Искусственно приобретенное бесплодие.

10. Причини непродуктивних осіменінь самок

1 1. Затримка посліду у корів та заходи з її профілактики.

12. Застосування методів патогенетичної терапії у корів, хворих на мастит та ендометрит.

13. Діагностика, терапія і профілактика субклічних маститів у корів. Субклинические маститы у коров.Диагностика, лечение.

1 4. Характеристика, основних етапи Харківської технології асептичного отримання і кріоконсервації

15. Асфіксія новонароджених. Невідкладна допомога при народженні плодів у стані гіпоксії і асфіксії. (Asphyxia neonatorum)

16. Застосування трансплантації ембріонів у великої рогатої худоби у племінному господарстві, характеристика основних етапів цього методу.

17. Кесарів розтин. Основні його етапи. Обгрунтуйте доцільність його використання.

18. Передчаснї перейми та їх причини. Методи лікування і профілактики. Преждевременные потуги

19.Ссновні правила допомоги тваринам при нормальних та патологічних пологах.

Помощь при патологических родах. Родоразрешающие операции

Расширение шейки матки (Incisio cervicis)

Кесарское сечение (Sectio caesarea)

Экстирпация беременной матки (Hysterectomia)

Искусственный аборт (Abortus artificialis)

20.Патологія яєчників у корів. Методи дифєренцІйної діагностики. Методи лікування і профілактики.

Ситуаційні завдання з акушерства та гінекології

Перевод вертикального положения плода в нижнюю позицию путем бинтования конечностей и с применением клюки Кюна

6. Серед корів дійної череди господарства часто спостерігають незаразні симптоматичні аборти. Які можливі причини? Розробіть заходи з профілактики.

7. В господарстві 20-30% корів щорічно після пологів хворіють на мастит. Можливі причини? Ваші дії.

8. При диспансеризації дійної череди встановлено, що 20% корів хворіють на субклінічній мастит. Причини? Розробіть заходи з профілактики.

9. В зимово-стойловий період утримання у корів після пологів тривалий час відсутня стадія статевого збудження. Які можливі причини анафродізії? Ваші дії щодо нормалізації відтворної функції корів.

10. В господарстві у корів спостерігаються запальні процеси зовнішніх статевих органів, піхви і шийки матки. Які можливі причини? Ваші дії.

Внутренние незаразные болезни

1. Болезни молодняка

2. Ацидоз рубца.

3. Бронхопневмания.

4. Болезни эндокарда.

5. Болезни миокарда. Миокардит.

6. Электролечение.

7. Диетотерапия.

8. Патогенетическая терапия.

9. Дифференциабьный диагноз при болезнях печени.

10. Болезни путей мочевыделения.

11. Болезни, вызываемые недостаточностью витаминов гиповитаминозы.

12. Микроэлементозы.

13. Кетоз.

14. Темпания рубца.

15. Поражения почек.

16. Дифференциальная диагностика колик у лошадей.

17. Гастриты и гастроэнтериты.

18. Диспансеризация крс

19. Болезни нервной системы. Гиперемия и анемия головного мозга.

20. Стресс.

21. Болезни поджелудочной железы.

22. Клеточные и гуморальные факторы иммунной защиты.

23. Аллергические болезни.

24. Анемии.

25. Гемморагические диатезы.

26. Нарушение углеводного, белкового и липидного обмена. (см. Кетоз)

27. Макроэлементозы.

28. Болезни эндокринной системы.

29. Переполнение зоба, гастроэнтерит птицы.

30. Болезни пушных зверей.

Ситуаційні завдання з внутрішніх незаразних хвороб

Токсикология

1. Отравления натрия хлоридом

2. Хлорорганические соединения.

3. Пестициды: обозначение, классификация…

4. Отравление нитратами и нитритами.

5. Отравления синильной кислотой.

6. Фосфорорганические соединения

8. Производных мочевины и фенилмочевины.

9. Производные карбаминовой, тио-и дитиокарбаминовой кислот (карбаматы)

10. Клинико токсикологическая классификация ядовитых растений.

12. Микотоксикозы.

13. Синтетические пиретроиды

14. Отравления животных солями меди, мышьяка и фтора. Медьсодержащие соединения

15. Методы ветеринарно-санитарной токсикологической оценки продуктов животноводства.

Ситуаційні завдання з токсикології.

4. Після згодовування коровам запарених кормових буряків з відваром розвинулися явища іктоксикації: збудження, а внедовзі пригнічення,

6.У свиноматок, яким на протязі тижня згодовували цвілий зернофураж, розвинулися симптоми: почервоніння і збільшення вульви, а у деяких

9. Після згодовування свиням скошеної напередодні зелененої маси люцерни

6. Переливание крови у животных. Группы крови, стабилизаторы.

При потере большого количества крови введение изотонических жидкостей недостаточно; в таких случаях кровяное давление после кратковременного повышения вновь катастрофически падает. В подобных условиях эффективным является переливание крови.

До начала XX века попытки воспользоваться кровью донора с целью возмещения кровопотерь предпринимались многократно и результаты их в условиях эксперимента на собаках были много­обещающими; у человека же в результате переливания крови наступали тяжелые осложнения, часто заканчивавшиеся смертью. Такие же явления наблюдали при гемотрансфузии у лошадей. Было также выяснено, что дефибринирование крови не устраняет эти осложнения.

Причины неудач переливания крови стали ясными при исполь­зовании на практике учения об агглютинации. Подобно тому, как сыворотка иммунных животных склеивает в комки соответствую­щие бактерии, кровь животного одного вида склеивает эритроци­ты животного другого вида. Это явление, именуемое гетерогемо-агглютинацией, в последующем было установлено и в пределах одного вида (изогемоагглютинация). После склеивания в комки эритроциты растворяются в сыворотке (гемолиз).

Ландштейнер (1901) различал три группы крови. Позже (1907 г.) Янский выделил четвертую, характеризующуюся тем, что ее сы­воротка не агглютинирует эритроциты остальных групп, ее же эритроциты агглютинируются сыворотками всех групп. Наличие четырех групп крови было самостоятельно установлено также Моссом (1910). Дунгерн и Гиршфельд (1911) пришли к выводу, что для объяснения факта существования четырех групп крови допускать наличие двух агглютининов (а,Р) в сыворотке мух агглютининогенов (А, В) в эритроцитах. У лошади и крупного рогатого скота, согласно имеющимся И1.Ш, практически применимо такое же деление групп крови

Л. Герман, В. Н. Чередков и др.). Агглютинация эритроцитов разных групп крови сыворотками

(ставлена в следующей таблице.

1) кровь первой группы можно переливать животным всех остальных групп, так как ее эритроциты не агглютинируются и*с сыворотками;

2) сыворотка крови четвертой группы лишена способности агглютинировать эритроциты: животным с кровью этой группы можно переливать кровь всех остальных групп;

3) кровь второй группы можно переливать животным с кровью второй и четвертой групп;

4) кровь третьей группы можно переливать животным с кровью третьей и четвертой групп.

Допустимость переливания крови разных групп наглядно пред­ставлена на схеме рисунка 2.

Необходимо учитывать возможность агглютинации эритроци­тов переливаемой крови сывороткой реципиента. Меньшее зна­чение имеет обратное явление - агглютинация эритроцитов реци­пиента сывороткой донора, так как разведение сыворотки донора в крови реципиента ослабляет ее агглютинационную способность. Сыворотка крови лошади и крупного рогатого скота в срав­нении с сывороткой крови человека обладает слабо выражен­ными агглютинационными свойствами.

У собак, групповые различия крови отсутствуют. Поэтому у них допустимо однократное переливание кро­ви без ограничений, обуслов­ленных изогемоагглютинанацией. Повторные гемотрансфузии от одного и того же донора у животных всех видов сопро­вождаются сравнительно часто тяжелыми, иногда со смертель­ным исходом, анафилактоидными реакциями. Несовместимость крови, возникающая после первой гемогрансфузии, объясняет­ся появлением в плазме реципиента изоиммунных антител. Они образуются в качестве ответной реакции организма на введе­ние крови как специфического изоантигена. Посттрансфузионные осложнения наблюдаются также при переливании крови другого донора. Определение совместимости крови.

Совместимость крови донора и реципиента можно установить путем перекрестной агглютинации. Из вены до-пора и реципиента берут tf разные пробирки по 10 мл крови и дают ей отстояться до полного свертывания. Отделившуюся сыворотку сливают в другие пробирки, а из сгустков крови после прибавле­ния некоторого количества физиологического раствора взбалтыва­нием готовят взвеси эритроцитов. Полученные сыворотки и взвеси аритроцитов проверяют на взаимную агглютинацию. Для этого на предметное стекло помещают отдельно по две капли сыворотки, прибавляют к ним перекрестно по маленькой капле взвеси эритро­цитов, смешивают стеклянной палочкой или покачиванием, лег­ким встряхиванием и в течение 5 минут наблюдают за ходом реак­ции.

Агглютинация отсутствует в обеих пробах, когда донор и реци­пиент принадлежат к одной группе. Наличие агглютинации в сы­воротке реципиента при отсутствии ее в сыворотке донора слу­жит противопоказанием к переливанию. При отрицательной ре­акции в сыворотке реципиента и положительной реакции в сыво­ротке донора переливание допустимо в ограниченных количествах.

В практике переливания крови у животных возможна также прямая проба. При этом описанным выше способом смеши­вают две капли сыворотки реципиента с каплей крови, взятой из уха намечаемого донора. Положительная реакция указывает на необходимость подобрать в качестве донора другое животное.

Определение групп крови с помощью стандартных сы­вороток имеет значительные преимущества, позволяя свое­временно выделять животных-доноров, удовлетворяющих всем тре­бованиям практики. В СССР такие сыворотки для лошадей впер­вые приготовил В. А. Герман (1935).

Для определения групповой принадлежности крови достаточ­но иметь стандартные сыворотки второй (А) и третьей (В) групп. На предметном стекле, белой тарелке или блюдце на некотором отдалении одна от другой ставят пометки - II, III. У этих поме­ток наносят по две капли соответствующих сывороток. Затем к последним прибавляют по маленькой (с булавочную головку) кап­ле исследуемой крови. При покачивании стекла кровь смешивает и с сывороткой, придавая ей равно­мерно красный огтенок. Через 20- "О, секунд появляются признаки итлютинации в одной из сывороток или в обеих, или же агглютинация от­сутствует (окучивания эритроцитов не наблюдается). Отсутствие агглю-iинации в обеих сыворотках указы-иает на принадлежность крови к пер-пой (0 оф) группе, агглютинация в обеих сыворотках - на кровь четвер-юй (АВО) группы, агглютинация юлько в сыворотке третьей группы - на кровь второй (А(3) группы, агглю-!инация только в сыворотке второй i руппы - на кровь третьей (Ва) ™ i руппы (рис. 3). Реакцию ставят при измпературе воздуха в пределах 15-20°. За ходом реакции наблю­дают не меньше Г) минут. Возмож­ные ошибки при пользовании двумя (ыворотками надежно устраняются дополнительной контрольной реакцией с сывороткой первой группы: когда в последней агглютинация отсутствует, ее не должно быть и в обеих других.

Псевдоагглютинация напоминает истинную за­метным просветлением сыворотки, возникающим в обычный срок. Она сравнительно часто наблюдается у животных, характеризует­ся скучивлнием эритроцитов в монетные столбики и особенно резко выражена у лошадей, что объясняют (И. П. Власовский и др.) малым содержанием в их крови лецитина. Распознавать псевдо­агглютинацию нетрудно: при сотрясении капли или прибавлении к ней физиологического раствора сыворотка вновь становится рав­номерно красной. Применение разведенных эритроцитов обычно предупреждает псевдоагглютинацию.

П а и а г г л ю т и н а ц и я возникает большей частью, если реакцию ставят при низкой температуре. В этом случае сыворотка агглютинирует эритроциты крови всех групп, в том числе и своей; реакция протекает до 30 минут. Иногда трудно отличить ее от истинной агглютинации.

В практике удобно пользоваться универсальными донорами, то есть животными с кровью первой (Ооф) группы. При гемотрансфузии средних доз от таких доноров редко на-блкГдаются осложнения (при необходимости переливания боль­ших количеств крови донор и реципиент должны быть одной группы).

В выборе доноров строго соблюдают условия, исключающие перенос с кровью инфекционных заболеваний.

Способы переливания крови

Переливание крови осуществляется или непосредственно от донора реципиенту (прямой метод), или обычным способом внутривенных вливаний стабилизированной крови (непрямой метод).

Прямой метод гемотрансфузии путем сообщения вен донора и реципиента через специальные аппараты (рис. 4) прост. Система трубок аппарата промывается жидким вазелиновым мас­лом и 4%-ным раствором лимоннокислого натрия, чем в известной мере предотвращается травмирование кровр и образование сгуст­ков.

У крупных домашних животных удобоприменим способ соеди­нения вен донора и реципиента резиновой трубкой с оливой (рис. 5), снабженной иглами на концах. Донора помещают на возвышенную площадку. В его яремной врне пелотом, наложенным у основания шеи, создается повышенное давление крови (рис. 6). Пункцию ве­ны делают одновременно у обоих животных. В этот момент система трубок должна быть разобщена у иглы реципиента, а свободный конец трубки опущен вниз. Когда кровь начинает вытекать равно­мерной струей, этот конец трубки присоединяют к игле, и кровь поступает в вену реципиента. Чтобы знать дозировку переливаемой крови, необходимо предварительно определить пропускную спо­собность собранной системы. При условии, что в течение 1 минуты

через систему протекает 100 мл крови, для переливания 2 л потребуется 20 минут.

Трубку стерилизуют кипячением в собранном виде, затем внутренние стенки ее смачивают стерильным вазе­линовым или камфорным маслом. Смы­вающийся со стенки канала иглы, трубки и оливы остаток масла уносит­ся током первых порций крови, выте­кающей до момента соединения труб­ки с иглой реципиента. За током крови можно следить на стенке косо поставленной оливы.

Место пункции вен при продол­жительных вливаниях обезболивают (инфильтрационная анестезия).

При непрямом методе кровь поступает из вены донора в сосуд, где смешивается для предот­вращения свертывания со стабили­затором - лимоннокислым натрием: 4%-ный раствор его, приготовлен­ный на дважды дистиллированной воде, наливают в сосуд из расчета 100 мл на 1 л крови, получаемой от донора. В этом сосуде, помещенном в теплую (37-40°) воду и равномерно покачиваемом, кровь смешивают со ста­билизатором. Реципиенту ее вводят внутривенно. Цитрированная кровь, сохраняемая при температуре 4°, не свертывается в течение 7-10 дней. В таком виде ее можно транспортиро­вать на значительные расстояния, что представляет большое преимущество не­прямого метода гемотрансфузии.

Рис. 4. Прибор для прямого переливания крови. Рис. 5. Трубочная системадля прямого переливания крови у животных по И. Е. Поваженко: а - игла для пункции вены донора, *б - игла для пункции вены реципиента, виг - рези­новые трубки, д - стеклянная олива.

В ветеринарной практике в качестве кратковременного стабилизатора ис­пользуют хлористый кальций (150 мл 10%-ного раствора на 1 л крови лоша­ди). Он у крупного рогатого скота как и 10%-ный раствор салициловокислого натрия, менее пригоден для гемотранс­фузии; требуется сравнительно высокая концентрация (2: 10, 3: 10) препарата в крови.

Перед переливанием крови обяза­тельна биологическая проба. Она заключается в инфузии неболь­шого количества (200-300 мл для ло­шади) крови с последующим наблюде­нием за реципиентом в течение 10 ми­нут. При несовместимости крови у него возникают симптомы гемолитического шока; нормальное состояние его в течение этого

срока окончательно подтверждает совместимость крови. Намеченное количество ее вводят медленно, не больше 100 мл в 1 минуту.

Механизм действия перелитой крови

Положительное влияние пере­литой крови сказывается незамед­лительно. Вместе с ней в организм реципиента вводятся ферменты, гормоны, белки, органические соли. При значительной кровопотере одни эритроциты в физиологиче­ском растворе, как и другие изо­тонические жидкости, не способны поддерживать жизнь,тогда как сыворотка совместимой крови без эритроцитов оказывает такое же благотворное влияние, как и цельная кровь.

Переливание крови или гемотрансфузия - разновидность инфузионной терапии, в процессе которой от донора к реципиенту переливается либо цельная кровь, либо ее отдельные компоненты (фракции).

Для переливания используется:

• Цельная кровь с консервантом для предотвращения внесосудистого свертывания (чаще всего, это цитрат натрия, в пропорции 4:1). Кровь забирается у донора в стерильный сосуд, где смешивается с цитратом и дополнительно с изотоническим раствором натрия хлорида. Не допускается применение любых других растворов (глюкозы, Рингера, Рингера-Локка и т. д.).
• Отдельные фракции форменных элементов (тромбоцитарная, эритроцитарная массы, плазма). При этом нужная фракция отделяется при помощи сепарирования, смешивается с изотоническим раствором натрия хлорида и вводится в организм.

Слева кровь реципиента, справа кровь реципиента и донора. Хорошо видна разница в количестве форменных элементов.

К сожалению, альтернативы человеческим банкам крови в ветеринарии пока не существует, поэтому зачастую владельцы и сами ветеринарные врачи вынуждены искать доноров самостоятельно. Далеко не каждое животное способно стать донором.

К донорству допускаются животные, удовлетворяющие следующим условиям:

• возраст 2-6 лет;
• у кошек, вес не менее 3 кг, у собак - не менее 15 кг;
• наличие действующих прививок;
• отсутствие хронических заболеваний, носительства вирусных, бактериальных инфекций (подтверждается лабораторно);
• удовлетворительное клиническое состояние;
• с гематокритом не менее 40;

При этом важно помнить, что кровь донора для реципиента является чужеродным биологическим материалом, именно поэтому нужно:

1. Профилактировать возникновение аллергической реакции, гемотрансфузионного шока.

Для этого перед процедурой переливания проводится десенсибилизирующая терапия в виде введения средств, снижающих аллергический ответ (кальция глюконат, дексаметазон) за 10-15 минут до начала процедуры. Стоит отметить, что чаще всего аллергическая реакция немедленного типа (крапивница, аллергический отек морды, шеи, подгрудка, чихание и кашель со слизистыми выделениями из глаз) развивается вовсе не на кровь реципиента, а на консервант (т. н. цитратный шок)

2. Предупредить возможную несовместимость крови донора и реципиента

Стоит заметить, что у собак процент возникновения несовместимости крови донора и реципиента при первом переливании крайне мал засчет того, что в кровотоке пока не образовалось специфически антител, которые запускают процесс активизации иммунной реакции. А вот при повторном и последующих переливаниях у собак,и при любом переливании крови у кошек необходимо проводить так называемую перекрестную пробу.

Суть пробы заключается в следующем: в отдельной небольшой емкости смешивается сыворотка донора и форменные элементы реципиента, или наоборот. После этого все аккуратно перемешивается. Через 5-7 минут производится учет реакции: если форменные элементы схватились в тугой ком (гемагглютинация), либо наоборот, «расплавились» в сыворотке,окрасив ее в слабо-красный (гемолиз), кровь донора считается неподходящей для реципиента по причине несовместимости. В случае полного равномерного смешивания кровь считается совместимой.

Нужное количество крови для реципиента рассчитывается, исходя из показателей общего анализа крови, а именно, из числа гематокрита. Общепризнанным является тот факт, что для восстановления 1 % гематокрита реципиенту необходимо перелить 1-5 мл цельной крови X вес в килограммах.

Забор крови у донора, как правило, осуществляется непосредственно перед переливанием ее реципиенту (исключением является плазма, ее можно замораживать на срок до 15-20 суток). Для забора крови чаще всего используется яремная вена, иногда - периферические вены. Если процедура забора крови для донора является излишне психотравмирующей, ему проводят седацию (чаще всего, кошкам).

Процедура переливания подразумевает под собой длительное нахождение животного в стационарных условиях, так как скорость гемотрансфузии регулируется в соответствии с состоянием пациента и длительность процедуры может достигать 8-12 часов. При этом смесь для гемотрансфузии периодически слегка подогревается, для облегчения восприятия материала, а также для профилактики температурного шока.

В дальнейшем минимум через неделю,максимум через пару недель (7-21 день, в зависимости от массивности гемотрансфузии и изначальной тяжести состояния) производится контрольный анализ крови для определения результата.

Зачастую переливание крови - процедура неоднократная. В среднем, для восстановления животного после тяжелой анемии требуется от 3 до 5 переливаний. Частота гемотрансфузий, их объем рассчитываются индивидуально в каждом отдельно взятом случае.

При соблюдении техники, правил переливания крови, а также мер предосторожности это относительно безопасная процедура, аналогов которой пока нет ни в ветеринарной, ни в гуманитарной медицине.

Клинический случай

Собака породы стаффордширский бультерьер по кличке Тофа в возрасте 8 лет.

Фото 1. Собака была настолько слаба, что сама не ходила, но на переливании начала оживать. Стоит обратить внимание, для гемотрансфузии используется специальная система с фильтром в камере,чтобы мелкодисперсные сгустки не проходили в трубочку.

Фото 2. Пациент на гемотрансфузии вел себя спокойно, переносимость процедуры была отличная, наблюдались общие симптомы в виде гипертермии, небольшой одышки, покраснения слизистых. Симптомов аллергической реакции не проявилось во многом благодаря предварительной десенсибилизирующей терапии

Первичный общий анализ крови Тофы, измененные показатели и нормы:

RBC (эритроциты) 1,39X10^12/L при норме 5,50-8,50

HCT (гематокрит) 9,6 % при норме 37-55

HGB (гемоглобин) не определяется

WBC (лейкоциты) 0,24X10^12/L при норме 5,5-16,9

PLT (тромбоциты) 150 k/µL при норме 170-500

Первичный биохимический анализ крови Тофы, измененные показатели и нормы:

UREA (мочевина) 16,8 mmol/L при норме 2,5-9,6

СREA (креатинин) 335 µmol/L при норме 44-159

Активную детоксикационную терапию ввиду малого количества эритроцитов проводить было нельзя, во избежании усиления гипоксического синдрома. Было решено провести пробную гемотрансфузию в 2 этапа: в день забора крови и через пару дней. Большой объем крови, разбитый на два призван был снизить нагрузку на все системы организма, особенно на мочетоделительную.

В первое переливание собаки было введено около 150 мл цельной крови, что соответствует восстановлению около 7 ед. гематокрита. При повторном, основном переливании пациенту ввели в общей сложности около 400 мл цельной крови.

В перерывах между гемотрансфузиями собаке вводили растворы подкожно и капельно внутривенно, проводилась симптоматическая терапия, была назначена диета. Промежуточный контроль осуществляемого лечения проводился по биохимическим показателям, а также опираясь на самочувствие животного, которое значительно улучшилось через неделю после второй гемотрансфузии.

Контрольные анализы крови удалось сделать лишь через пару месяцев:

Контрольный общий анализ крови Тофы, измененные показатели и нормы:

RBC (эритроциты) 7,66X10^12/L при норме 5,50-8,50

HCT (гематокрит) 55 % при норме 37-55

HGB (гемоглобин) 17,6

WBC (лейкоциты) 6,0X10^12/L при норме 5,5-16,9

PLT (тромбоциты) 313 k/µL при норме 170-500

Контрольный биохимический анализ крови Тофы, измененные показатели и нормы:

UREA (мочевина) 7,2mmol/L при норме 2,5-9,6

СREA (креатинин) 220 µmol/L при норме 44-159

В последствие Тофа порадовала нас длительной ремиссией и, несмотря на то, что почечная недостаточность, это заболевание, которое полностью не излечивается, собака получила благоприятный прогноз.

При тяжелых травмах и ранениях на охоте или в боях между собаками, болезнях возникает необходимость в переливании крови для спасения животного. Для этих целей подбираются доноры и создаются специальные банки при ветеринарных клиниках. Есть ли у собак группа крови? Ведь если есть, то возникает необходимость в определении совместимости крови разных животных с помощью классификации ее видов, то есть выделения в группы. Информация о группе еще нужна при разведении породы, для установки отцовства. Об этом и поговорим далее.

Как у всех млекопитающих, в организме собаки есть сердечно-сосудистая система, заполненная кровью. Она содержит в себе два основных компонента: плазму, то есть жидкую составляющую, и различные клетки. Они находятся в соотношении 70% и 30%. В плазме растворены белки, гормоны, витамины, питательные вещества.

К клеткам относятся эритроциты, тромбоциты, лейкоциты. Кровяные тельца красного цвета – эритроциты, представляют наибольшую группу. В эритроцитах содержится железосодержащий красный пигмент – гемоглобин, поставщик кислорода к тканям. Именно гемоглобин окрашивает ее в красный цвет. Тромбоциты, во взаимодействии с белками, способствуют ее свертываемость при повреждениях тканей и сосудов, предупреждая потери. Клетки белого цвета – лейкоциты, стоят на страже иммунной системы.

Функции

Кровь является основой жизни организма. Она обеспечивает циркуляцию кислорода, ферментов, электролитов, питательных веществ между тканями. В ее функцию также входит удаление избытка воды, минеральных веществ, продуктов обмена через легкие, почки, кишечник.

Терморегуляторная и защитная функции крови собаки разносят тепло и защищают от инфекций и кровопотерь. Она является основным гомеостатиком, поддерживая кислотное равновесие и водно-электролитный баланс.

Сколько групп крови у собак

Группы у них отличаются от человеческих. Выделяют 11 основных групп, которые отличаются составом белков на поверхности эритроцитов и типу антигена. В системе обозначения используются цифры 1-11 и буквы латиницы A,Tr, B, C, D, F, J, K, L, M, N. Кровь у большей половины собак, независимо от породы, определяется как 1-я или А группа.

Группа крови у собак и кошек серьезно отличается. У кошек различают всего лишь 3 группы и они несовместимы.

В зависимости от типа известных эритроцитных антигенов у собак принято междуврачебное обозначение DEA – Dog Erythrocyte Antigen. И различают 6 групп DEA1.1, DEA1.2, DEA3, DEA4, DEA 5, DEA 7. Группы DEA1.1— и DEA4+ считаются универсальными для донорства. Однако не стоит забывать об индивидуальных особенностях организма. Тест на совместимость нужно провести обязательно.

Какая группа крови у собак наиболее универсальна

Важным является фактор DEA1.1, который заносится в паспорт собаки. Он может быть положительным и отрицательным. Половина животных имеют DEA1.1+. Им можно транспортировать кровь любой собаки, желательно с таким же фактором DEA1.1+. А вот те, у кого DEA1.1— считаются универсальными донорами.

Если при переливании (гемотрансфузии), использовать донора с DEA1.1+, а реципиента с DEA1.1—, то первый раз пройдет успешно, так как отсутствуют антитела к другой крови. А к следующему разу у реципиента уже появятся антитела. При повторном переливании возможны иммунные реакции с тяжелыми последствиями.

Совместимость крови проверяют смешиванием двух видов и наблюдают наличие антигенов. Либо применяют специальные тесты совместимости. В любом случае проверка на совместимость обязательна.

Резус фактор у собак, по примеру людей, отсутствует.

Примечательно, что собачья кровь не имеет различий, связанных с породой. От можно переливать, например, а от можно при условии их совместимости.

Если появилась такая необходимость, то определить группу крови собаке круглосуточно получится в дежурной ветеринарной клинике. Там обязательно найдется необходимый инвентарь и квалифицированный персонал, который вам поможет. После установления всех необходимых параметров, их обязательно нужно записать в паспорт вашего питомца.

Практические руководства по гемотрансфузии у кошек общепризнаны и широко доступны. Несмотря на это ксенотрансфузия (переливание крови от другого вида) цельной крови собак кошкам в настоящее время выполняется время от времени или регулярно в нескольких странах, включая Францию, Италию и Австралию. Ветеринарные хирурги, таким образом, могут впервые сталкиваться с кошками, получившими такую гемотрансфузию и может потребоваться информация о возможном исходе этой процедуры. Также может возникнуть неотложная ситуация с анемичной кошкой, когда совместимая кошачья кровь недоступна, а срочная гемотранфузия необходима. Учитывая недостаточную коммерческую доступность растворов с переносчиками кислорода на основе гемоглобина (таких как Oxyglobin) как альтернативы совместимой кошачьей крови, возможные редкие, но реальные случаи, когда трансфузия цельной собачьей крови или эритроцитарной массы крови собаки кошке может рассматриваться как процедура, спасающая жизнь.

Целью этой статьи является обзор информации, опубликованной в ветеринарной литературе о гемотрансфузии кошкам цельной собачьей крови и результатах, которые можно ожидать от этой процедуры. Другие варианты ксенотрансфузии, сообщенные у кошек и собак и не обозревающиеся в данной статье, включают трансфузию раствора полимеризованного гемоглобина коров (bovine haemoglobin glutamer-200: Oxyglobin; OPKBiotechLLC) и трансфузию человеческого альбумина.

История ксенотрансфузии

Ксенотрансфузия часто использовалась на заре трансфузионной медицины. Хотя первой описанной трансфузией была успешная трансфузия крови от собаки к собаке в 1665 году, первые гемотрансфузии людям в 1667 г были выполнены с использованием крови ягнят, телят или собак (рис 1).

Рис 1 Два врача, переливающих кровь человеку от собаки. 1671г

Хотя некоторые из трансфузий крови животных человеку приводили к побочным реакциям, таким как выраженная гемоглобинурия и плохим исходам, другие трансфузии были успешны, улучшая состояние анемичных пациентов. В конце 19 века гемотрансфузия человеку крови животных использовалась часто, особенно в течение франко-прусской войны 1870-1871гг. Между 1863 г и 1875 г были опубликованы 4 исследования ксенотрансфузий человеку, в которых сообщалось о благоприятных исходах в удивительно большом количестве случаев. В серии из 154 случаев, описанных в 1863 г французский физиолог сообщал о 64 случаях выздоровления, 20 случаях улучшения состояния, 43 случаев без изменения состояния, 1 сомнительном исходе и 26 смертях. Однако позднее было показано, что эритроциты от большиства домашних животных гемолизировались в крови человека вследствие присутствия в ней естественно встречающихся антител против антигенов эритроцитов животных, обьясняя появление острых гемолитических реакций. Также было показано, что титры этих естественно встречающихся антител увеличиваются после контакта с антигенами(иммунизация), обьясняя появление более тяжелых реакций после повторных ксенотрансфузиий.

После этих открытий, человеческие ксенотрансфузии были практически прекращены и открытие групп крови человека в 1900г открыло дорогу развитию внутривидовой трансфузиологии человека. Ветеринары также, следуя за человеческой медициной, развивали внутривидовую трансфузиологию животных; в 1950 х были установлены группы крови у домашних животных. В частности, группы крови у кошек были определены в 1950 г. Однако кошки всегда рассматривались как животные, представляющие особенные проблемы для трансфузиологии. Маленький размер кошек- доноров делает сбор крови технически более трудным, чем у других видов, часто требуется седация кошек-доноров. Возможно вследствие этих причин, и несмотря на прекращение межвидовых гемотрансфузий у других видов с начала 1900х, можно найти сообщения, главным образом, опубликованные в 1960х, об эффектах трансфузий цельной собачьей крови кошкам.

Обзор опубликованных исследований и сообщенных случаев у кошек

1 Тест агглютинации на стекле, который заключался в смешивании 0,06 мл цельной крови собаки(донора) с 0,06 мл кошачей плазмы (реципиента) и 0,24 мл солевого раствора на стекле и затем в исследовании стекла на наличие макроскопической агглютинации в течение 5 минут;

2 Тест на гемолиз invitro, который заключался в смешивании 2 мл собачьей (донора) цельной крови с 2 мл кошачьей (реципиента) цельной крови, инкубирования пробирки в течение 1 часа при комнатной температуре и исследовании затем надосадочной жидкости на наличие гемолиза.

Симптомов несовместимости при проведении этих тестов не было выявлено. Затем этим кошкам назначалась цельная кровь собаки внутривенно в дозе 5-50 мл, со скоростью 2-3 мл/мин. Во время проведения трансфузий и в последующие дни не было выявлено клинических симптомов трансфузионных реакций. После трансфузии эти же тесты на совместимость повторялись ежедневно.

Реакция агглютинации на стекле при смешивании цельной крови собак с плазмой реципиентов-кошек развивалась во всех, кроме одного, случаях между 4 и 7 днями после трансфузии. Это было вызвано продукцией новых антител против эритроцитов собак у кошек- реципиентов; в одном случае, реакция агглютинации стала положительной через 12 дней после трансфузии. Во всех, кроме одного, случаях гемолиз invitro эритроцитов собак стал очевидным после 14-21 дней; в одном случае, гемолиз эритроцитов собаки появился раньше (после 7 дней).

Двадцати кошкам была проведена повторная гемотрансфузия цельной крови собак. У 4 кошек, которым повторная гемотрансфузия была проведена в пределах 4 дней после первой гемотрансфузии, не развивались какие либо симптомы трансфузионной реакции. У 16 кошек была проведена повторная гемотрансфузия 5-40 мл цельной крови собак через 6-100 дней после первой трансфузии; у всех, кроме одной, кошек развились клинические симптомы анафилаксии (диспное, цианоз, саливация, депрессия и кома), а у оставшейся кошки развилась гемоглобинурия. Десять кошек умерли, 9 из них в в течение минут или часов после повторной трансфузии. Одна кошка выжила после начальной анафилактической реакции, но умерла через 3 дня с сиптомами выраженной гемоглобинемии и желтушности. Шесть других кошек выжили без специфического лечения после их трансфузионной реакции. Две другие кошки получили гемотрансфузии 10-15мл цельной крови собак в течение 6 последовательных дней без каких либо клинических симптомов трансфузионных реакций. В конце, в той же статье сообщается о трансфузии собачьей плазмы 2 кошкам без каких либо клинических симптомов трансфузионных реакций. Реакция агглютинации на стекле собачьих эритроцитов, смешанных с плазмой реципиентов-кошек, стала положительной через 9 дней. Повторная трансфузии плазмы собак (время не указывалось) вызвала анафилактическую реакцию у обоих кошек; одна из кошек выжила. Долговременное наблюдение за кошками, подвергшимися гемотрансфузиям было невозможно.

Второе исследование (1963)

Во втором исследовании, опубликованном в 1963 году, 7 кошкам были проведены гемотрансфузии 11мл/кг цельной собачьей крови, причем эритроциты были помечены радиоактивным хромом. Не проводились тесты на совместимость крови до или после трансфузии. Побочных реакций на гемотрансфузии не наблюдалось. Средняя продолжительность жизни трансфузированных эритроцитов собак была 3,6 дней (максимум 5,4 дня). Долговременное наблюдение за кошками, подвергшимися гемотрансфузиям было невозможно.

Третье исследование (1968)

1 Основной тест на совместимость, который включал смешивание 2 капель увлажненных эритроцитов собаки(донора) (5% суспензия эритроцитов в 0,9% растворе натрия хлорида) с 2 каплями сыворотки кошки(реципиента).

2 Дополнительный тест на совместимость, который выполнялся смешиванием 2 капель увлажненных эритроцитов кошки (реципиента) (5% суспензия эритроцитов в 0,9% растворе натрия хлорида) с 2 каплями сыворотки собаки(донора).

Пробирки затем инкубировались при комнатной температуре в течение 30 минут. Пробирки проверялись на наличие макроскопической агглютинации; если в пробирке очевидной агглютинации не наблюдалось, одна капля размещалась на стекло и исследовалась для выявления микроскопически видимой агглютинации. Пробирки затем центрифугировались и надосадочная жидкость исследовалась на наличие гемолиза. Основной тест на совместимость не показал invitroгемолиза или агглютинации эритроцитов собак в сыворотке кошки; однако агглютинация эритроцитов развивалась в 2 случаях, когда эритроциты кошки смешивались с сывороткой собаки(дополнительный тест совместимости). Четырем кошкам затем была проведена трансфузия с 10-40 мл цельной собачьей крови; не было выявлено клинических симптомов трансфузионных реакций в течение трансфузии или в последующие дни. Последующие тесты на совместимость(теми же методами) показали in vitro агглютинацию и гемолиз эритроцитов собак, развиающиеся через 6-7 дней после трансфузии.Одна кошка получила вторую трансфузию цельной собачьей крови через 4 дня после первой трансфузии, и одна кошка получила 2 повторные трансфузи цельной собачьей крови (10 мл каждая) через 1 и 2 дня после первой трансфузии; у этих кошек не развивались какие либо клинические признаки трансфузионной реакции. Одна кошка получила вторую трансфузию цельной собачьей крови (10 мл) через 7 дней после первой трансфузии и умерла через несколько часов после второй трансфузии. Долговременное наблюдение за кошками,получившими гемотрансфузии было невозможно.

Это же исследование сообщало о гемотрансфузиях цельной собачьей крови 20 кошкам, большая часть которых страдала от тяжелой анемии вследствие травмы или оперативного вмешательства. В этих клинических случаях не были выполнены тесты на совместимость до или после трансфузий. Количество переливаемой крови варьировало от 5 до 30 мл. Пятнадцать кошек получили однократную гемотрансфузию и 5 кошек получили повторные гемотрансфузии, повторная трансфузия проводилась в пределах 2 дней после первой инфузии. Быстрое улучшение клинической симптоматики после трансфузии сообщалось в 18 случаях; в двух других случаях не было отмечено улучшения состояния. Сообщалось о 2 случаях слабо выраженных трансфузионных реакций(оба случая во время трансфузии) и гипертермии в 2 случаях (один случай в течение трансфузии, другой на следующий день после трансфузии).Выраженных трансфузионных реакций не наблюдалось. Пятнадцать кошек выжили после начального периода госпитализации и трансфузионного периода; пять кошек умерли в течение трансфузии или в последующие дни, наиболее вероятно вследствие заболеваний, имевшихся до трансфузии.

Четвертое исследование (1969)

1 Тест агглютинации на стекле, который заключался в смешивании 0,05 мл увлажненных эритроцитов собаки(донора) (5% суспензия эритроцитов в 0,9% растворе натрия хлорида) с 0,10 мл сыворотки кошки(реципиента) и последующем исследовании стекла для выявления макроскопической агглютинации;

2 Тест на наличие гемолиза invitro , который включал смешивание 3 капель увлажненных эритроцитов собаки(донора) (2% суспензия эритроцитов в 0,9% растворе натрия хлорида) с 3 каплями сыворотки кошки(реципиента) , последующее инкубирование в течение 20 минут при комнатной температуре, а затем исследование пробирки для выявления макроскопически видимой агглютинации эритроцитов и исследование надосадочной жидкости на наличие гемолиза после центрифугирования. Тесты на совместимость,которые были выполнены до трансфузий не показали симптомов несовместимости. Клинических симптомов трансфузионных реакций во время трансфузии и в последующие дни не наблюдалось.

При проведении тестов на совместимость после гемотрансфузий во всех случаях была выявлена агглютинация эритроцитов собаки сывороткой кошки –реципиента на 6 день после трансфузии. Кошки, которые получили дополнительные гемотрансфузии цельной собачьей крови в пределах 6 дней от первоначальной инфузии не демонстрировали трансфузионные реакции или побочные эффекты(количество кошек, получивших повторные трансфузии и количество трансфузий на кошку не сообщалось), но все кошки, получившие трансфузии цельной собачьей крови через 7 и более дней после первой трансфузии собачьей крови быстро умерли(количество кошек не сообщалось). Три кошки лечились очень высокой дозой циклофосфамида (21 мг/кг1 раз в день внутривенно в течение 7 дней) в попытке вызвать иммуносупрессию и возможную переносимость повторных трансфузий цельной крови собак позднее чем 7 дней после первой трансфузии, но этого было недостаточно для предотвращения смерти после повторной трансфузии у всех трех кошек.

Сообщение о случае (2004)

Единственное за последние годы сообщение о гемотрансфузии цельной собачьей крови кошке было представлено на конференции в 2004 г в Австралии. Кошка с группой крови В поступила в ветеринарный консультационный центр в выраженной нерегенеративной анемией. Доноров с группой крови В были в это время не оказалось в наличии, а Oxyglobin в Австралии был недоступен. Кошке была произведена трансфузия крови лабрадора как последнее средство. Основной и дополнительный тесты на групповую совместимость были выполнены до трансфузии, реакция несовместимости не была выявлена. Пробная доза цельной собачьей крови -1 мл была назначена кошке внутривенно, при этом не было выявлено клинически трансфузионной реакции. После этого, полная доза цельной собачьей крови-130 мл была назначена кошке в течение 48 часов в виде маленьких внутривенных болюсов.Состояние кошки улучшилось и не было отмечено побочных эффектов вследствие трансфузии. Гематокрит увеличился до значения, рассматриваемого как более безопасного для проведения общей анестезии (17%).

Дальнейшие исследования выявили наличие эритроидной лейкемии. Кошка была эутаназирована через неделю; к этому времени развилась слабо выраженная желтушность, которая рассматривалась как вероятное следствие трансфузии. Автор заключил, что трансфузия цельной собачьей крови кошке была не идеальным способом лечения и пришел к выводу, что она может быть полезна в неотложной ситуации при отсутствии совместимой крови кошек или раствора с переносчиком кислорода на основе гемоглобина, для того чтобы это позволило выполнить диагностические процедуры.

Обсуждение

На основании ограниченного количества случаев, сообщенных в ветеринарной литературе (62 кошки), с публикациями, датированными шестидесятыми годами прошлого века, можно заключить, что кошки, по видимому, не имеют первичных, естественно встречающихся антител против антигенов эритроцитов собак . Не было выявлено реакций несовместимости в сообщенных случаях при проведении основных тестов на совместимость крови до трансфузии(тест агглютинации на стекле или тест на гемолиз invitro). Редкие случаи несовместимости были выявлены в дополнительных тестах совместимости, проведенных до трансфузии, с агглютинацией эритроцитов реципиента, когда они смешивались с сывороткой донора, что могло вызывать разрушение в определенной степени эритроцитов реципиента антителами донора. Маловероятно,что это имеет клиническое значение, поскольку обьем переливаемой плазмы донора обычно маленький и подвергается быстрому разведению при попадании к реципиенту. Однако трансфузия больших количеств цельной крови собак, содержащих антитела против эритроцитов реципиента может вызвать значительный гемолиз эритроцитов реципиента, ухудшая имеющуюся анемию. Поэтому рекомендуется трансфузия совместимой по основным и дополнительным тестам цельной крови. Маловероятно,что совместимость по дополнительным тестам на совместимость клинически значима, если переливается эритроцитарная масса, в отличие от цельной крови.

Нет опубликованных данных о наличии островыраженных побочных реакций у кошек, получавших однократные трансфузии крови собак. Имеются редкие (5 кошек) сообщения о слабо выраженных трансфузионных реакциях, которые включали тахипное и слабовыраженное повышение температуры в течение трансфузии или в последующие 24 часа, а также желтушность в течение недели после трансфузии. Однако, проведенные исследования подтвердили, что антитела против эритроцитов собак продуцируются в течение 4-7 дней после трансфузии, что доказано посттрансфузионной положительной реакцией агглютинации на стекле и тестом гемолиза invitro. Продолжительность жизни переливаемых эритроцитов меньше 4 дней, в сравнении с 30 днями для эритроцитов совместимых групп крови кошек. Любые повторные трансфузии крови собак позже чем 6 дней после первой трансфузии вызывают анафилаксию(сообщенную у более чем 18 кошек), которая часто фатальная (более чем 66% летальности в сообщенных случаях).

При отсроченных гемолитических трансфузионных реакциях, новообразованные антитела против эритроцитов входят в контакт с трансфузируемыми эритроцитами, которые преждевременно удаляются из циркуляции и подвергаются внесосудистому гемолизу. Гемоглобинурия обычно не наблюдается. Клинические симптомы, включая лихорадку и иногда желтушность, обычно слабо выражены и могут быть незамечены. Это может обьяснить, почему такие симптомы редко были отмечены в проведенных исследованиях после однократной трансфузии цельной крови собак кошкам. Внезапное падение гематокрита, однако, ожидается в пределах 4 дней после трансфузии с разрушением перелитых эритроцитов (в то время как эритроциты совместимой крови кошек имеют продолжительность жизни 30 дней). У анемичных кошек это приведет к рецидиву клинически значимой анемии, несмотря на развитие одновременно значимого регенеративного ответа. Специфическая терапия отсроченной гемолитической трансфузионной реакции обычно не требуется, но дальнейшие трансфузии и поддерживающее лечение может потребоваться, если пациент становится выраженно анемичным повторно.

Заключение

Гемотрансфузия кошкам цельной крови собак или эритроцитарной массы не рекомендуется как рутинная процедура, поскольку поскольку приносит значительно меньшую пользу, чем переливание совместимой цельной крови кошек или эритроцитарной массы. Гемотрансфузия кошке цельной крови собаки будет полезна в течение короткого периода времени, вследствие ожидаемой отсроченной гемолитической реакции. Отсроченная гемолитическая реакция, хотя и слабо выраженная, может ухудшить состояние кошки, которой перелили кровь. В конце концов, мы не можем исключить возможность тяжелых острых реакций, не описанных до сих пор.

Хотя гемотрансфузия кошкам цельной собачьей крови или эритроцитарной массы собак не рассматривается как «наилучшая» методика, она, однако, может быть рассмотрена в исключительным случаях и в действительно неотложных ситуациях, если анемичная кошка никогда ранее не получала такую трансфузию, если нет возможности получить кровь от донора с совместимой кровью и если растворы с переносчиком кислорода на основе гемоглобина недоступны. Основной и дополнительный тесты на совместимость всегда должны выполняться до трансфузии крови. В таких неотложных случаях, трансфузия крови собак может стабилизировать на короткое время анемичную кошку до проведения анестезии или диагностической процедуры или до получения совместимой крови кошек. Такая трансфузия может также, возможно, стабилизировать кошку с регенеративной анемией до того как разовьется адекватная регенерация клеток костного мозга. Любые дополнительные трансфузии собачьей цельной крови или эритроцитарной массы собак позднее чем 4-6 дней после первой трансфузии ожидаемо вызовут тяжелую, часто жизнеугрожающую анафилаксию и абсолютно противопоказаны.

Journal of Feline Medicine and Surgery February 2013

1. Catherine Bovens

2. Tim Gruffydd-Jones

1. The Feline Centre, School of Veterinary Science, University of Bristol, Bristol, UK

1. Catherine Bovens DVM CertSAM MRCVS, Small Animal Hospital, Langford Veterinary Services, Langford, Bristol, BS40 5DU, UK